This article has been published in the peer-reviewed journal WikiJournal of Science (2019). Click to view the published version.

텔라도라자리아원숭아속

Teladorsagia circumcincta
텔라도라자리아원숭아속
A scanning electron micrograph of the nematode Teladorsagia circumcincta.tif
전자 마이크로그래프 스캔
과학적 분류 edit
킹덤: 애니멀리아
망울: 네마토다
클래스: 크로마도레아목
순서: 랍디티다
패밀리: 트라이코스트롱길루스과
속: 텔라도라시아
종:
T. 환각제
이항식 이름
텔라도라자리아원숭아속
(스타델만, 1894년)
동의어
  • 오스테르타기아 환각제

텔라도라자키아 환각제는 양과 염소의 가장 중요한 기생충 중 하나인 네마토드다.이전에는 오스테르타기아 환각제로 알려져 있었으며 구어적으로 갈색 위충으로 알려져 있다.호주와 영국 등 시원하고 온화한 지역에서 흔히 볼 수 있다.감염되기 쉬운 양과 아이들 사이에는 상당한 변화가 있다.많은 변화가 유전적이고 면역 반응에 영향을 미친다.기생충은 중증 감염 동물의 특징인 상대 단백질 결핍을 일으키는 1형 과민성 반응을 유도한다.감염 경로를 예측할 수 있는 기계론적 수학적 모델들이 있다.감염을 억제할 수 있는 방법은 다양하며, 통제 조치의 조합이 가장 효과적이고 지속 가능한 통제를 제공할 가능성이 높다.

분류학

텔라도라시아는 트라이코스트롱길과와 슈퍼패밀리 트라이코스트롱글로이데아과에 속하는 오스테르타기니아과에 속한다.[1][2]오스테르타기아, 하몬쿠스, 그래피듐은 보통 별개의 하위 가정에 배정되는 세자와 밀접한 관련이 있다.텔라도라시아 다비티아니와 텔라도라시아 트리푸르카타는 아마도 표현형 변형(모형형)일 것이다.[3]

형태학

어른들은 짧은 부칼강으로 날씬하고, 색깔은 황갈색이다.[4]평균적인 벌레 크기는 양마다 상당히 다르다.암컷은 몸집이 0.6~1[5].2cm이며 수컷은 일반적으로 약 20% 작다.[4]

라이프 사이클

라이프 사이클은 비교적 간단하다.남성 성인과 여성 성인은 아보마 표면에서 번식한다.알은 faeces에서 통과되어 1단계(L1), 2단계(L2), 3단계 유충(L3)을 거쳐서 발달한다.3단계 유충은 먹이를 줄 수 없고 감염 단계다.섭취 후 3단계 유충은 48시간 이내에 위선에서 발달하는 4단계 유충(L4)으로 빠르게 불룩하게 된다.감염 후 8일 정도 지나면 위선에서 젊은 성인들이 나타나 성숙하고 번식한다.준비 기간은 12일 정도로 짧을 수 있다.[6]성숙한 암컷의 자궁에 있는 난자의 수는 10개 미만에서 60개[6] 이상까지 다양할 수 있으며 숙주 면역 반응에 크게 의존한다.[7]성인 암컷 벌레가 하루에 생산하는 계란의 수는 0개에서 약 350개로 추정되며, 긴 암컷이 더 많은 알을 낳는다.[7][7]

역학

그것은 양의 상당한 경제적 손실에 책임이 있다.[8][9][10]이 종에는 상대적으로 연구가 부족하지만 염소에 심각한 손실을 입히는 것으로 알려져 있다.대부분의 국가에서 3단계 유충에 대한 감염은 봄에 재개되며, 변태성 암컷에 의한 다량의 난자 생산에 의해 유발된다.[11]주요 방아쇠는 ewe의[12] 상대 단백질 결핍으로 보이며, periparturient 상승은 보충 단백질을 공급하여 예방할 수 있다.[13]전형적인 패턴에서, 계란 생산량은 한여름까지 증가하다가 감소한다.[14][15]자유생물의 발달은 온도와 습기에 의해 영향을 받고 수 년 내에 섭취할 수 있는 감염성 유충의 수가 상당히 다양하다.결과적으로, 한 해 동안의 계란 생산 패턴도 여러 해 동안 다양하다.[15]풀의 성장도 감소하는 방목 기간이 끝나면 감염성 유충의 수는 점차 감소한다.계절의 끝은 기후에 따라 국가마다 다르며, 또한 지역 날씨에 따라 국가 내에서도 매년 달라질 가능성이 있지만 기록되어 있지 않다.예를 들어, 스코틀랜드에서는 보통 10월 말에 시즌이 끝난다.[citation needed]

난자 수에서[16] 동물들 사이에 상당한 변화가 있고 이러한 변동의 대부분은 유전적인 이다.[17]변동의 근원은 동적이며, 그 해의 경과에 따라 상대적인 중요성이 변화한다.유전적 영향과는 별도로 다른 변동의 다른 원천은 섭취 및 비중독적 유전적 영향의 변동을 포함하여 각 개인에 특정한 모성 및 공통적인 환경 영향과 영향을 포함한다.[16]새끼 양의 성별, 생년월일(싱글 또는 쌍둥이), 생년월일, 네모드 감염에 대한 조기 노출 강도는 상대적으로 작지만 여전히 중요한 영향을 미친다.[16]관측된 개수와 참새알 수 사이의 불가피한 변화도 관측된 변동에 기여한다.[16]대부분의 기생충에 비해 T. croculcta는 감염의 자연사와 개인들 사이의 변동의 근원을 비교적 잘 이해하고 있다.[citation needed]

임상 징후 및 진단

본질적으로 모든 방목 동물들은 감염에 노출되어 있고 대부분의 동물들은 성인이 되거나 4단계 유충이나 둘 다 체포될 때 몇몇의 네마토드를 가지고 다닐 것이다.질병관리의 경우 감염을 진단하는 것이 아니라 감산, 동물복지 감소, 기생성 위장염 등을 보일 정도로 충분히 심하게 감염된 동물이나 무리를 식별하는 것이 목적이다.심하게 감염된 동물은 상대적으로 단백질이 부족하다.임상 증상으로는 식욕 저하, 성장 성능 저하, 체중 감소, 간헐적 설사 등이 있다.[18]임상 징후 외에도 난자 수 및 감염 시기를 이용하여 심각한 영향을 받는 동물을 식별한다.[4]그러나, 지렁이의 수가 매우 많은 양들은 매우 적은 알을 낳는다; 지렁이 수의 계란 생산에 강한 밀도에 의존하는 효과가 있다.[19]

유전학

좁은 의미에서의 특성유전성은 유전적 변동의 비율을 총 변동으로 나눈 것이다.[20]그것은 선택에 대한 반응을 결정한다.[21]난자 수는 비교적 신질감염에 강한 동물을 식별하고 선별하는데 널리 사용된다.[22][23][24]호주와 뉴질랜드에서 가장 진보된 곳으로는 해몬쿠스 콘토르투스 또는 T. crocantaTrichostrongylus colubriformis의 혼합물이 지배적이다.

자연적으로 감염된 스코틀랜드 흑표면 양들이 주로 T. croccta 알로 오염된 밭을 방목하는 경우, 난자 수의 유전성은 출생 후 처음 두 달 동안은 0과 크게 다르지 않았다가 방목 기간이 끝날 무렵에는 약 0.3으로 증가했다.[25]비슷한 유전성 추정치가 텍셀 양떼에 대해 얻어졌다.[26]이러한 유전성은 젖소의 쇠고기 및 우유 생산 증가율의 유전성과 유사하며, 자연적으로 주로 T. croculcta 감염에 대한 내성을 위한 선택적 사육의 가능성을 나타낸다.[26]

자연감염 후 새끼 양의 난자 수에서 유전적 변화는 주로 지렁이 형성 및 생존이나 유충 억제보다는 지렁이의 크기와 다산에 영향을 미치는 유전적 변화 때문이다.[5]실제로 다산과 밀접한 관련이 있는 성인 암컷 웜 크기의 유전성은 0.6으로[5] 추정된 반면, 웜 수의 유전성은 0.14에 불과했다.[5]웜 크기의 높은 유전성은 적합성 관련 특성으로 알려진 가장 높은 유전성 중 하나이다.

감염에 대한 저항성의 근거가 되는 인과 다형성을 식별하기 위해 많은 노력을 기울여 왔다.[27][28]특히 두 가지 유전적 영역은 여러 연구에서 연관성을 보여주었다: 주요 조직적합성 복합체[29][30][31][32][33] DRB1 위치 및 인터페론 감마 위치.[34]양들의 불균형성은 인간과 비교했을 때 상당히 높으며, 원인적 위치도 이러한 지역에 있을 필요가 없고 아마도 이 지역에 있거나 주변에 있을 것이다.한 개 이상의 연구에서[28] 선정적인 (근접하지만 통계적으로 상당히 유의하지는 않은) 연관성을 보인 많은 지역이 있으며, 이들 중 일부는 아마도 중성 내성을 위한 인과적 다형성일 것이다.

많은 후보 유전자들이 면역 반응에 영향을 미치고 유전적 변화는 주로 감염에 대한 면역 반응에 영향을 미치는 것으로 보인다.비록 다른 메커니즘이 유전적 변동에 기여할 수 있다는 단서가 있지만.[35]

면역반응

T. crocominca에 대한 저항의 두 가지 주요한 징후가 있다: 웜 생장의 조절과 웜의 확립과 생존의 통제.성인 웜의 크기와 다산의 규제는 특히 4단계 유충에 대한 IgA 활동과 강력하고 일관성 있게 연관되어 있다.[6][36][37]이 효과는 매우 강하고 일관성이 있어 IgA 활동과 매우 강하게 관련되는 다른 면역 메커니즘이 없기 때문에 인과관계가 있을 가능성이 높다.또한 Eosinophil 수는 웜 길이와 다산과도[38] 연관되어 있으며, Eosinophils와 IgA가 상호작용하여 웜의 성장과 다산에 영향을 줄 가능성이 있다.Eosinophils는 Haemonchus contortus에 대한 감염에 대한 저항성에 연루되어 왔다.[39][40]어시노필은 기생충 감염에[41] 대한 생쥐의 저항력에 훨씬 약한 역할을 하지만 이는 쥐가 어시노필의 IgA 수용체가 부족하다는 사실을 반영할 수 있다.[42]

T. 원근법에 대한 저항의 또 다른 주요 메커니즘은 IgE돛대 세포 매개 조절 웜 설정과 생존이다.[6]다시 말하지만, 이 연관성은 너무 강하고 일관적이어서 어떤 다른 반응의 표식적인 역할을 하기보다는 인과관계가 있을 가능성이 높다.3단계 유충에 대한 IgE 활동이 가장 중요한 것 같다.[43][44][6]IgE에 의해 인식된 분자의 수는 상대적으로 적은 것 같다; 2차원 서양 블롯팅은 적어도 두 개의 다른 알레르기 유발 물질에 대한 증거가 있음에도 불구하고 단지 9개의 분자만을 식별했다.[45]비교를 위해 IgA는 3단계 유충에 대해 155개의 분자를 인식했다.[46]

병리학

면역 반응은 신물질 감염에 따른 병리학의 많은 부분을 책임지는 것으로 보인다.[18]면역 억제는 많은 임상 징후를 없앤다.[47]

감염은 상대적인 단백질 결핍을 유발하여 체중 증가 감소나 심지어 체중 감소를 초래한다.이것은 부분적으로 식욕 감퇴에 기인한다.[48][49]소화 효율도 떨어진다.상피 장벽의 병변은 단백질의 손실을 초래하고, 게다가 단백질은 조직 회복과 면역 및 염증 작용으로 전환된다.식단의 단백질 보충은 병원생식이 상대 단백질 결핍의 결과라고 강하게 주장하는 임상적[48][50] 징후의 출현을 막을 수 있다.[citation needed]

감염 후, 마스트 세포가 분해되어 상피 세포 사이의 촘촘한 결합에서 오크루딘클라우딘을 소화하는 세린 프로테아제 마스트 세포 프로테아제 II를 방출한 결과 점막 장벽이 파괴된다.[18]상피과다증, 아보마숨 pH 증가, 펩신겐혈증, 식욕부진 등 병리학적 반응의 다수는 상피세포의 내부 표면에서 침의 상피성장인자가 수용체에 결합함으로써 촉발된 보수과정의 결과물이다.[18]장기적이고 지속적인 감염은 수리 과정을 병원성 메커니즘으로 파괴한다.적어도 소의 경우, 아보마살과 장내종의 혼합 감염은 단일종 감염보다 더 병원적이다.소장의 감염은 아보마섬에서 잃어버린 단백질의 재흡수를 억제한다는 것이 그럴듯한 설명이다.[citation needed]

수학적 모델링

많은 집단이 기술론적 모델에서 반 기계론적 모델, 거의 전적으로 기계론적 모델에 이르는 감염 과정을 모델링했다.[51][52][53][54][55]처음에는 모델이 주로 학문적 관심사였지만 점점 더 많은 모델들이 실험을 계획하는데 유용한 역할을 하고 있다.모델은 자연적이고 의도적인 감염에서 발생하는 가설을 테스트할 수 있다. 예를 들어 유전학적 접근법을 사용하여 박하 치료가 필요하지[56] 않은 동물을 식별하고 감염 통제를 위한 잠재적 전략을 제안할 수 있는지 여부.[11][54][56]

감염관리

가축의 종양 감염을 억제하는 방법은 박하 치료, 방목 관리, 생물학적 통제, 영양 보충, 예방접종, 유전적 저항의 [57][58]6가지로 분류할 수 있다.각 방법마다 장단점이 있다.

안테민트 치료는 보통 5가지 종류의 광범위한 스펙트럼 약물로 하나 이상의 치료를 포함한다. 약: 벤지미다졸, 레바미솔, 매크로클릭 락톤, 아미노 아세토니트릴 유도체, 스피로인돌레.좁은 스펙트럼 약품도 이용할 수 있다.약물 제제는 국가마다 다르며 일부 국가만이 약물 조합 사용을 허용한다.박하 치료는 저렴하고 단순하며 효과적이지만 기생충 개체군의 약물 내성이 발달하여 위협을 받고 있다.[59]기생충 개체군의 약물 내성 개발을 지연시키기 위해 조합의 사용을 포함한 여러 가지 약물 내성 개발을 완화하기 위한 전략이 있다.[60]마약은 너무 싸고 효과적이어서 보통 한 집단의 모든 동물을 치료하는 것이 더 쉽고 저렴했다.그러나, 모든 개인이 치료를 필요로 하는 것은 아니며, 현재 최선의 방법은 약물 내성의 개발을 지연시키기 위해 선택된 동물을 대상으로 하는 것이다.어떤 동물을 치료할 것인가를 결정하는 기준과 치료받지 않은 개체수의 크기는 적극적인 연구의 대상이다.[61]

방목 관리는 보통 가축을 방목할 때 풀의 공급을 늘리는 것을 목표로 하지만 양을 감염시킬 수 있는 감염성 물질 수를 줄일 수도 있다.[62]옵션에는 스타킹 밀도 조정, 회전 방목, 덜 감염된 목초지의 사용, 동물과 식물 사이의 목초지 사용, 다른 종의 동물들 간의 목초지 사용 또는 어린 동물들과 나이든 가축들 사이의 목초지 사용을 번갈아 포함한다.[57]방목 관리는 저렴하고 단순하며 적어도 일부 요소는 널리 사용되지만[63] 격리 시 매우 효과적이지 않으며 비현실적일 수 있다.[62]

더딩토니아 국기의 포자를 이용한 생물학적 통제는 최근 호주에서 허가되었으며 매우 효과적일[64] 수 있지만 규칙적이고 아마도 매일 먹이를 먹어야 한다.[citation needed]

영양 보충제는 임상 징후를 없앨 수 있지만 매우 비쌀 수 있다.[65]단백질이나 비단백질 질소원과의 보충이 에너지원과의 보충보다 더 중요해 보인다.[57]요소와 같은 비단백질 공급원은 효과적이고[48] 상대적으로 저렴하지만 높은 용량으로 독성을 피하려면 많은 주의가 필요하다.[citation needed]

현재 완전히 믿을 수 있는 백신은 없지만 큰 진전이 이루어지고 있다.[66]일반적으로 나이가 많은 동물을 보호하는 것은 비교적 쉽지만 어린 동물을 보호하는 것은 매우 어렵다.[57]

유전적 저항성에는 텍셀,[31] 이종교배, 선택적 사육과 같은 상대적으로 저항적인 품종의 사용이 포함된다.선택적 사육은 매우 효과적일[24] 수 있고 거의 완전히 박하 치료의 필요성을 없앨 수 있지만 전문적 전문지식이 필요하다.[citation needed]

대부분의 전문가들은 제어 방법의 조합이 더 효과적이고 지속가능할 것이라고 생각한다.그러나 제어 방법의 가장 효과적인 조합은 농장마다 다를 수 있으며 설계 및 구현에 전문적 전문지식이 필요하다.[58]

참조

기사는 CC BY 4.0 라이센스(2019년)에 따라 다음과 같은 출처에서 개작되었다. Michael J Stear; David Piedrafita; Sarah Sloan; Dalal Alenizi; Callum Cairns; Caitlin J Jenvey (24 April 2019). "Teladorsagia circumcincta" (PDF). WikiJournal of Science. 2 (1): 4. doi:10.15347/WJS/2019.004. ISSN 2470-6345. Wikidata Q63328534.

  1. ^ Hoberg, E. P.; Lichtenfels, J. R. (1994). "Phylogenetic Systematic Analysis of the Trichostrongylidae (Nematoda), with an Initial Assessment of Coevolution and Biogeography". The Journal of Parasitology. 80 (6): 976–96. doi:10.2307/3283448. ISSN 0022-3395. JSTOR 3283448. PMID 7799171.
  2. ^ Lichtenfels, J.R.; Hoberg, E.P. (1993). "The systematics of nematodes that cause ostertagiasis in domestic and wild ruminants in North America: an update and a key to species". Veterinary Parasitology. 46 (1–4): 33–53. doi:10.1016/0304-4017(93)90046-p. ISSN 0304-4017. PMID 8484224.
  3. ^ Grillo, Victoria; Craig, Barbara H.; Wimmer, Barbara; Gilleard, John Stuart (2008). "Microsatellite genotyping supports the hypothesis that Teladorsagia davtiani and Teladorsagia trifurcata are morphotypes of Teladorsagia circumcincta". Molecular and Biochemical Parasitology. 159 (1): 59–63. doi:10.1016/j.molbiopara.2008.01.001. PMID 18295911.
  4. ^ a b c Taylor, M. A.; Coop, R. L.; Wall (2007). Veterinary parasitology (3rd ed.). Oxford, UK: Blackwell. ISBN 9781118687109. OCLC 842892323.
  5. ^ a b c d Stear, M. J.; Bairden, K.; Duncan, J. L.; Holmes, P. H.; McKellar, Q. A.; Park, M.; Strain, S.; Murray, M.; Bishop, S. C. (1997). "How hosts control worms" (PDF). Nature. 389 (6646): 27. Bibcode:1997Natur.389...27S. doi:10.1038/37895. ISSN 0028-0836. PMID 9288962. S2CID 4427948.
  6. ^ a b c d e Stear, M. J.; Bishop, S. C.; Doligalska, M.; Duncan, J. L.; Holmes, P. H.; Irvine, J.; McCririe, L.; McKellar, Q. A.; Sinski, E. (1995). "Regulation of egg production, worm burden, worm length and worm fecundity by host responses in sheep infected with Ostertagia circumcincta". Parasite Immunology. 17 (12): 643–652. doi:10.1111/j.1365-3024.1995.tb01010.x. ISSN 0141-9838. PMID 8834764. S2CID 36959091.
  7. ^ a b c Stear, M.J.; Bishop, S.C. (1999). "The curvilinear relationship between worm length and fecundity of Teladorsagia circumcincta". International Journal for Parasitology. 29 (5): 777–780. doi:10.1016/s0020-7519(99)00019-3. ISSN 0020-7519. PMID 10404275.
  8. ^ Nieuwhof, G. J.; Bishop, S. C. (2005). "Costs of the major endemic diseases of sheep in Great Britain and the potential benefits of reduction in disease impact". Animal Science. 81 (1): 23–29. doi:10.1079/asc41010023. ISSN 1357-7298.
  9. ^ Morgan, Eric; Charlier, Johannes; Hendrickx, Guy; Biggeri, Annibale; Catalan, Dolores; von Samson-Himmelstjerna, Georg; Demeler, Janina; Müller, Elizabeth; van Dijk, Jan (2013). "Global Change and Helminth Infections in Grazing Ruminants in Europe: Impacts, Trends and Sustainable Solutions". Agriculture. 3 (3): 484–502. doi:10.3390/agriculture3030484. ISSN 2077-0472.
  10. ^ Lane, Joe; Jubb, Tristan; Shephard, Richard; Webb-Ware, John; Fordyce, Geoffry (2015). Priority list of endemic diseases for the red meat industries. mla.com.au (Report). Meat & Livestock Australia Limited.
  11. ^ a b Singleton, D. R.; Stear, M. J.; Matthews, L. (2010). "A mechanistic model of developing immunity to Teladorsagia circumcincta infection in lambs". Parasitology. 138 (3): 322–332. doi:10.1017/s0031182010001289. ISSN 0031-1820. PMID 20946694. S2CID 10610983.
  12. ^ Donaldson, J.; van Houtert, M. F. J.; Sykes, A. R. (1998). "The effect of nutrition on the periparturient parasite status of mature ewes". Animal Science. 67 (3): 523–533. doi:10.1017/s1357729800032951. ISSN 1357-7298.
  13. ^ Houdijk, J.G.M; Kyriazakis, I; Jackson, F; Huntley, J.F; Coop, R.L (2000). "Can an increased intake of metabolizable protein affect the periparturient relaxation in immunity against Teladorsagia circumcincta in sheep?". Veterinary Parasitology. 91 (1–2): 43–62. doi:10.1016/s0304-4017(00)00255-7. ISSN 0304-4017. PMID 10889359.
  14. ^ Stear, M. J.; Bairden, K.; Bishop, S. C.; Gettinby, G.; McKellar, Q. A.; Park, M.; Strain, S.; Wallace, D. S. (1998). "The processes influencing the distribution of parasitic nematodes among naturally infected lambs". Parasitology. 117 (2): 165–171. doi:10.1017/s0031182098002868. ISSN 0031-1820. PMID 9778639.
  15. ^ a b Stear, M. J.; Abuagob, O.; Benothman, M.; Bishop, S. C.; Innocent, G.; Kerr, A.; Mitchell, S. (June 2005). "Variation among faecal egg counts following natural nematode infection in Scottish Blackface lambs". Parasitology. 132 (2): 275–80. doi:10.1017/s0031182005009029. ISSN 0031-1820. PMID 16209724. S2CID 21787310.
  16. ^ a b c d Stear, M.J.; Park, M.; Bishop, S.C. (1996). "The key components of resistance to Ostertagia circumcincta in lambs". Parasitology Today. 12 (11): 438–441. doi:10.1016/0169-4758(96)10069-7. ISSN 0169-4758. PMID 15275277.
  17. ^ Bishop, S. C.; Bairden, K.; McKellar, Q. A.; Park, M.; Stear, M. J. (1996). "Genetic parameters for faecal egg count following mixed, natural, predominantly Ostertagia circumcincta infection and relationships with live weight in young lambs". Animal Science. 63 (3): 423–428. doi:10.1017/s1357729800015319. hdl:20.500.11820/9aa208fc-c9e0-4929-9f84-e5f112ababc5. ISSN 1357-7298. S2CID 30090211.
  18. ^ a b c d Stear, M. J.; Bishop, S. C.; Henderson, N. G.; Scott, I. (2003). "A key mechanism of pathogenesis in sheep infected with the nematode Teladorsagia circumcincta". Animal Health Research Reviews. 4 (1): 45–52. doi:10.1079/ahrr200351. ISSN 1466-2523. PMID 12885208. S2CID 11701250.
  19. ^ Bishop, S. C.; Stear, M. J. (2000). "The use of a gamma-type function to assess the relationship between the number of adult Teladorsagia circumcincta and total egg output". Parasitology. 121 (4): 435–440. doi:10.1017/S0031182099006526. PMID 11072907. S2CID 39623031.
  20. ^ Falconer, D. S.; Mackay, T. F. G. (1996). Introduction to quantitative genetics (4th ed.). Essex, England: Longman. ISBN 9780582243026. OCLC 34415160.
  21. ^ Lynch, M. (1998). Genetics and analysis of quantitative traits. Sinauer. ISBN 978-0878934812. OCLC 709410500.
  22. ^ Woolaston, R. R.; Windon, R. G. (2001). "Selection of sheep for response to Trichostrongylus colubriformis larvae: genetic parameters". Animal Science. 73 (1): 41–48. doi:10.1017/s1357729800058033. ISSN 1357-7298.
  23. ^ Bisset, S. A.; Morris, C. A.; McEwan, J.C.; Vlassof, A. (2001). "Breeding sheep in New Zealand that are less reliant on anthelmintics to maintain health and productivity". New Zealand Veterinary Journal. 49 (6): 236–246. doi:10.1080/00480169.2001.36238. ISSN 0048-0169. PMID 16032198. S2CID 23515318.
  24. ^ a b Karlsson, L. J. E.; Greeff, J. C. (2006). "Selection response in fecal worm egg counts in the Rylington Merino parasite resistant flock". Australian Journal of Experimental Agriculture. 46 (7): 809. doi:10.1071/ea05367. ISSN 0816-1089.
  25. ^ Stear, M.J.; Bairden, K.; Bishop, S.C.; Buitkamp, J.; Duncan, J.L.; Gettinby, G.; McKellar, Q.A.; Park, M.; Parkins, J.J. (1997). "The genetic basis of resistance to Ostertagia circumcincta inlambs". The Veterinary Journal. 154 (2): 111–119. doi:10.1016/s1090-0233(97)80049-4. ISSN 1090-0233. PMID 9308398.
  26. ^ a b Stear, M. J.; Coop, R. L.; Jackson, F.; Bishop, S. C. (April 2004). "Genetic parameters for resistance to nematode infections in Texel lambs and their utility in breeding programmes" (PDF). Animal Science. 78 (2): 185–194. doi:10.1017/S1357729800053972. hdl:20.500.11820/8a5d0f8d-e1d6-46e7-ba99-4e89ca2fe469. ISSN 1357-7298.
  27. ^ Riggio, V; Matika, O; Pong-Wong, R; Stear, M J; Bishop, S C (2013). "Genome-wide association and regional heritability mapping to identify loci underlying variation in nematode resistance and body weight in Scottish Blackface lambs". Heredity. 110 (5): 420–429. doi:10.1038/hdy.2012.90. ISSN 0018-067X. PMC 3630823. PMID 23512009.
  28. ^ a b Benavides, Magda Vieira; Sonstegard, Tad S.; Van Tassell, Curtis (2016). "Genomic Regions Associated with Sheep Resistance to Gastrointestinal Nematodes". Trends in Parasitology. 32 (6): 470–480. doi:10.1016/j.pt.2016.03.007. ISSN 1471-4922. PMID 27183838.
  29. ^ Stear, M.J.; Innocent, G.T.; Buitkamp, J. (2005). "The evolution and maintenance of polymorphism in the major histocompatibility complex". Veterinary Immunology and Immunopathology. 108 (1–2): 53–57. doi:10.1016/j.vetimm.2005.07.005. ISSN 0165-2427. PMID 16099055.
  30. ^ Schwaiger, F.-W.; Gostomski, D.; Stear, M.J.; Duncan, J.L.; McKellar, Q.A.; Epplen, J.T.; Buitkamp, J. (1995). "An ovine Major histocompatibility complex DRB1 allele is associated with low faecal egg counts following natural, predominantly Ostertagia circumcincta infection". International Journal for Parasitology. 25 (7): 815–822. doi:10.1016/0020-7519(94)00216-b. ISSN 0020-7519. PMID 7558567.
  31. ^ a b Sweeney, T.; Hanrahan, J. P.; Ryan, M. T.; Good, B. (2016). "Immunogenomics of gastrointestinal nematode infection in ruminants - breeding for resistance to produce food sustainably and safely". Parasite Immunology. 38 (9): 569–586. doi:10.1111/pim.12347. ISSN 0141-9838. PMID 27387842. S2CID 21705109.
  32. ^ Hassan, Musa; Good, Barbara; Hanrahan, James P; Campion, Deirdre; Sayers, Gearoid; Mulcahy, Grace; Sweeney, Torres (2011). "The dynamic influence of the DRB1*1101 allele on the resistance of sheep to experimental Teladorsagia circumcincta infection". Veterinary Research. 42 (1): 46. doi:10.1186/1297-9716-42-46. ISSN 1297-9716. PMC 3063833. PMID 21385412.
  33. ^ Sayers, G.; Good, B.; Hanrahan, J. P.; Ryan, M.; Angles, J. M.; Sweeney, T. (August 2005). "Major Histocompatibility Complex DRB1 gene: its role in nematode resistance in Suffolk and Texel sheep breeds". Parasitology. 131 (3): 403–9. doi:10.1017/s0031182005007778. ISSN 0031-1820. PMID 16178362. S2CID 41968098.
  34. ^ Coltman, D. W.; Wilson, K.; Pilkington, J. G.; Stear, M. J.; Pemberton, J. M. (2001). "A microsatellite polymorphism in the gamma interferon gene is associated with resistance to gastrointestinal nematodes in a naturally-parasitized population of Soay sheep" (PDF). Parasitology. 122 (5): 571–582. doi:10.1017/s0031182001007570. ISSN 0031-1820. PMID 11393831. S2CID 9280474.
  35. ^ Hutchings, M.R; Knowler, K.J; McAnulty, R; McEwan, J.C (July 2007). "Genetically resistant sheep avoid parasites to a greater extent than do susceptible sheep". Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 274 (1620): 1839–1844. doi:10.1098/rspb.2007.0398. ISSN 0962-8452. PMC 2270930. PMID 17504740.
  36. ^ Strain, S. A. J.; Bishop, S. C.; Henderson, N. G.; Kerr, A.; Mckellar, Q. A.; Mitchell, S.; Stear, M. J. (2002). "The genetic control of IgA activity against Teladorsagia circumcincta and its association with parasite resistance in naturally infected sheep". Parasitology. 124 (5): 545–552. doi:10.1017/s0031182002001531. ISSN 0031-1820. PMID 12049417. S2CID 24172909.
  37. ^ Martinez-Valladares, M.; Vara-Del Rio, M. P.; Cruz-Rojo, M. A.; Rojo-Vazquez, F. A. (2005). "Genetic resistance to Teladorsagia circumcincta: IgA and parameters at slaughter in Churra sheep". Parasite Immunology. 27 (6): 213–218. doi:10.1111/j.1365-3024.2005.00769.x. ISSN 0141-9838. PMID 16048640. S2CID 29111670.
  38. ^ Stear, M. J.; Henderson, N. G.; Kerr, A.; Mckellar, Q. A.; Mitchell, S.; Seeley, C.; Bishop, S. C. (2002). "Eosinophilia as a marker of resistance to Teladorsagia circumcincta in Scottish Blackface lambs". Parasitology. 124 (5): 553–560. doi:10.1017/s0031182002001580. ISSN 0031-1820. PMID 12049418. S2CID 13216495.
  39. ^ González, Jorge F.; Hernández, Álvaro; Meeusen, Els N.T.; Rodríguez, Francisco; Molina, José M.; Jaber, José R.; Raadsma, Herman W.; Piedrafita, David (2011). "Fecundity in adult Haemonchus contortus parasites is correlated with abomasal tissue eosinophils and γδ T cells in resistant Canaria Hair Breed sheep". Veterinary Parasitology. 178 (3–4): 286–292. doi:10.1016/j.vetpar.2011.01.005. ISSN 0304-4017. PMID 21277683.
  40. ^ Meeusen, E.N.T; Balic, A (2000). "Do Eosinophils have a Role in the Killing of Helminth Parasites?". Parasitology Today. 16 (3): 95–101. doi:10.1016/s0169-4758(99)01607-5. ISSN 0169-4758. PMID 10689327.
  41. ^ Urban, J. F.; Katona, I. M.; Paul, W. E.; Finkelman, F. D. (January 1991). "Interleukin 4 is important in protective immunity to a gastrointestinal nematode infection in mice". Proceedings of the National Academy of Sciences. 88 (13): 5513–5517. Bibcode:1991PNAS...88.5513U. doi:10.1073/pnas.88.13.5513. ISSN 0027-8424. PMC 51907. PMID 2062833.
  42. ^ van Egmond, Marjolein; Damen, Cora A; van Spriel, Annemiek B; Vidarsson, Gestur; van Garderen, Evert; van de Winkel, Jan G.J (2001). "IgA and the IgA Fc receptor". Trends in Immunology. 22 (4): 205–211. doi:10.1016/s1471-4906(01)01873-7. ISSN 1471-4906. PMID 11274926.
  43. ^ Sinski, E.; Bairden, K.; Duncan, J.L.; Eisler, M.C.; Holmes, P.H.; McKellar, Q.A.; Murray, Max; Stear, M.J. (1995). "Local and plasma antibody responses to the parasitic larval stages of the abomasal nematode Ostertagia circumcincta". Veterinary Parasitology. 59 (2): 107–118. doi:10.1016/0304-4017(94)00761-z. ISSN 0304-4017. PMID 7483234.
  44. ^ Miller, H.R.P. (1984). "The protective mucosal response against gastrointestinal nematodes in ruminants and laboratory animals". Veterinary Immunology and Immunopathology. 6 (1–2): 167–259. doi:10.1016/0165-2427(84)90051-5. ISSN 0165-2427. PMID 6377673.
  45. ^ Murphy, L.; Eckersall, P. D.; Bishop, S. C.; Pettit, J. J.; Huntley, J. F.; Burchmore, R.; Stear, M. J. (2010). "Genetic variation among lambs in peripheral IgE activity against the larval stages of Teladorsagia circumcincta" (PDF). Parasitology. 137 (8): 1249–1260. doi:10.1017/s0031182010000028. ISSN 0031-1820. PMID 20233490. S2CID 10300312.
  46. ^ Ellis, Samantha; Matthews, Jacqueline B.; Shaw, Darren J.; Paterson, Steve; McWilliam, Hamish E.G.; Inglis, Neil F.; Nisbet, Alasdair J. (2014). "Ovine IgA-reactive proteins from Teladorsagia circumcincta infective larvae". International Journal for Parasitology. 44 (10): 743–750. doi:10.1016/j.ijpara.2014.05.007. ISSN 0020-7519. PMID 25004076.
  47. ^ Greer, A.W.; Huntley, J.F.; Mackellar, A.; McAnulty, R.W.; Jay, N.P.; Green, R.S.; Stankiewicz, M.; Sykes, A.R. (2008). "The effect of corticosteroid treatment on local immune responses, intake and performance in lambs infected with Teladorsagia circumcincta". International Journal for Parasitology. 38 (14): 1717–1728. doi:10.1016/j.ijpara.2008.05.010. ISSN 0020-7519. PMID 18577386.
  48. ^ a b c Stear, M.J; Bairden, K; Duncan, J.L; Eckersall, P.D; Fishwick, G; Graham, P.A; Holmes, P.H; McKellar, Q.A; Mitchell, S (2000). "The influence of relative resistance and urea-supplementation on deliberate infection with Teladorsagia circumcincta during winter". Veterinary Parasitology. 94 (1–2): 45–54. doi:10.1016/s0304-4017(00)00370-8. ISSN 0304-4017. PMID 11078943.
  49. ^ Wallace, D. S.; Bairden, K.; Duncan, J. L.; Eckersall, P. D.; Fishwick, G.; Gill, M.; Holmes, P. H.; McKellar, Q. A.; Murray, M. (1998). "The influence of dietary supplementation with urea on resilience and resistance to infection with Haemonchus contortus". Parasitology. 116 (1): 67–72. doi:10.1017/s0031182097001947. ISSN 0031-1820. PMID 9481776.
  50. ^ Coop, R.L.; Kyriazakis, I. (1999). "Nutrition–parasite interaction". Veterinary Parasitology. 84 (3–4): 187–204. doi:10.1016/s0304-4017(99)00070-9. ISSN 0304-4017. PMID 10456415.
  51. ^ Smith, G.; Grenfell, B.T. (1994). "Modelling of parasite populations: gastrointestinal nematode models". Veterinary Parasitology. 54 (1–3): 127–143. doi:10.1016/0304-4017(94)90087-6. ISSN 0304-4017. PMID 7846847.
  52. ^ Bishop, S. C.; Stear, M. J. (1997). "Modelling responses to selection for resistance to gastro-intestinal parasites in sheep". Animal Science. 64 (3): 469–478. doi:10.1017/s1357729800016088. ISSN 1357-7298.
  53. ^ Doeschl-Wilson, Andrea; Vagenas, Dimitrios; Kyriazakis, Ilias; Bishop, Stephen (2008). "Exploring the assumptions underlying genetic variation in host nematode resistance (Open Access publication)". Genetics Selection Evolution. 40 (3): 241–264. doi:10.1186/1297-9686-40-3-241. ISSN 1297-9686. PMC 2674900. PMID 18400148.
  54. ^ a b Prada Jimenez de Cisneros, J.; Stear, M. J.; Mair, C.; Singleton, D.; Stefan, T.; Stear, A.; Marion, G.; Matthews, L. (2014). "An explicit immunogenetic model of gastrointestinal nematode infection in sheep". Journal of the Royal Society Interface. 11 (99): 20140416. doi:10.1098/rsif.2014.0416. ISSN 1742-5689. PMC 4233724. PMID 25121649.
  55. ^ De Cisneros, Joaquin Prada Jimenez; Matthews, Louise; Mair, Colette; Stefan, Thorsten; Stear, Michael J. (2014). "The transfer of IgA from mucus to plasma and the implications for diagnosis and control of nematode infections" (PDF). Parasitology. 141 (7): 875–879. doi:10.1017/s0031182013002321. ISSN 0031-1820. PMID 24534018. S2CID 40790173.
  56. ^ a b Laurenson, Yan C.S.M.; Kyriazakis, Ilias; Bishop, Stephen C. (2013). "Can we use genetic and genomic approaches to identify candidate animals for targeted selective treatment". Veterinary Parasitology. 197 (1–2): 379–383. doi:10.1016/j.vetpar.2013.04.039. ISSN 0304-4017. PMID 23683653.
  57. ^ a b c d Stear, M. J.; Doligalska, M.; Donskow-Schmelter, K. (January 2006). "Alternatives to anthelmintics for the control of nematodes in livestock". Parasitology. 134 (2): 139–51. doi:10.1017/s0031182006001557. ISSN 0031-1820. PMID 17076922. S2CID 29448490.
  58. ^ a b Sayers, G.; Sweeney, T. (2005). "Gastrointestinal nematode infection in sheep – a review of the alternatives to anthelmintics in parasite control". Animal Health Research Reviews. 6 (2): 159–171. doi:10.1079/ahr2005108. ISSN 1466-2523. PMID 16583780. S2CID 22626885.
  59. ^ Bartley, D.J.; Jackson, F.; Jackson, E.; Sargison, N. (2004). "Characterisation of two triple resistant field isolates of Teladorsagia from Scottish lowland sheep farms". Veterinary Parasitology. 123 (3–4): 189–199. doi:10.1016/j.vetpar.2004.06.018. ISSN 0304-4017. PMID 15325045.
  60. ^ Leathwick, D.M.; Besier, R.B. (2014). "The management of anthelmintic resistance in grazing ruminants in Australasia—Strategies and experiences". Veterinary Parasitology. 204 (1–2): 44–54. doi:10.1016/j.vetpar.2013.12.022. ISSN 0304-4017. PMID 24439840.
  61. ^ Kenyon, F.; Greer, A.W.; Coles, G.C.; Cringoli, G.; Papadopoulos, E.; Cabaret, J.; Berrag, B.; Varady, M.; Van Wyk, J.A. (2009). "The role of targeted selective treatments in the development of refugia-based approaches to the control of gastrointestinal nematodes of small ruminants". Veterinary Parasitology. 164 (1): 3–11. doi:10.1016/j.vetpar.2009.04.015. hdl:2263/11170. ISSN 0304-4017. PMID 19450930.
  62. ^ a b Gruner, Lucas; Cortet, Jacques; Sauvé, Christine; Hoste, Hervé (2004). "Regulation of Teladorsagia circumcincta and Trichostrongylus colubriformis worm populations by grazing sheep with differing resistance status". Veterinary Research. 35 (1): 91–101. doi:10.1051/vetres:2003043. ISSN 0928-4249. PMID 15099506.
  63. ^ Gettinby, G.; Armour, J.; Bairden, K.; Plenderleith, R. (1987). "A survey by questionnaire of parasitic worm control in cattle and sheep at the Glasgow University Lanark practice". Veterinary Record. 121 (21): 487–490. doi:10.1136/vr.121.21.487. ISSN 0042-4900. PMID 3424632. S2CID 22669358.
  64. ^ Waller, P.J.; Schwan, O.; Ljungström, B.-L.; Rydzik, A.; Yeates, G.W. (2004). "Evaluation of biological control of sheep parasites using Duddingtonia flagrans under commercial farming conditions on the island of Gotland, Sweden". Veterinary Parasitology. 126 (3): 299–315. doi:10.1016/j.vetpar.2004.08.008. ISSN 0304-4017. PMID 15567593.
  65. ^ Coop, R.L.; Holmes, P.H. (1996). "Nutrition and parasite interaction". International Journal for Parasitology. 26 (8–9): 951–962. doi:10.1016/s0020-7519(96)80070-1. ISSN 0020-7519. PMID 8923142.
  66. ^ Nisbet, Alasdair J.; McNeilly, Tom N.; Greer, Andrew W.; Bartley, Yvonne; Oliver, E. Margaret; Smith, Stephen; Palarea-Albaladejo, Javier; Matthews, Jacqueline B. (2016). "Protection of ewes against Teladorsagia circumcincta infection in the periparturient period by vaccination with recombinant antigens". Veterinary Parasitology. 228: 130–136. doi:10.1016/j.vetpar.2016.09.002. ISSN 0304-4017. PMID 27692315.

외부 링크